一.单链抗体的背景
抗体是由B淋巴细胞产生的,能够参与体液免疫的免疫球蛋白,它由2条重链和2条轻链构成可变区及恒定区,抗体通过其可变片段去识别靶抗原。单链抗体(scFv)是人为改造后的抗体,1980年代,BIrd等人设计了scFv作为VL和VH的遗传融合体,它通过短柔性肽去链接VL和VH。scFv是具有抗体活性的最小结合单元,由于其缺少Fc结构域,因此它的体积很小,约为25 kDa,与全长抗体相比,它更容易穿透组织屏障,也更容易渗透在肿瘤组织中,能够应用于靶向癌症治疗药物方面,同时,在检测试剂中也发挥着重要作用。此外,基于scFv不含Fc片段的特点,其免疫原性较低,在人体内引起免疫反应的风险也比较小。scFv还可以在多种表达系统中进行高效表达,包括但不限于大肠杆菌、酵母、昆虫细胞、哺乳动物细胞表达系统,可根据不同需要进行选择。
图1.常规抗体及scFv抗体结构图
二.单链抗体文库的制备
单链抗体文库的制备基于噬菌体展示技术,将scFv抗体序列插入到噬菌体载体中,进而展示在噬菌体表面。为了获得靶标的单链抗体文库序列,首先我么们需要将靶标作为免疫原进行动物免疫,免疫达到所需效价后采集全血并分离其中的淋巴细胞(PBMC)提取细胞中的RNA,逆转录成cDNA,经PCR扩增得到VH及VL序列,将两者用Linker进行连接并克隆到噬菌体载体中得到重组质粒,将重组质粒转染到大肠杆菌进行噬菌体包装得到噬菌体抗体文库,用于后续文库的筛选。
图2.单链抗体文库制备流程
1. 免疫原的制备:我们需要制备出免疫原性好的靶标分子作为免疫原,免疫原的质量是得到优质抗体的关键。
2. 动物免疫:选择身体状态良好,免疫背景清楚的免疫动物进行免疫,免疫前需采取血清作为阴性对照,免疫方式为背部分散多点免疫,每两周进行一次。
3. PBMC分离:将免疫后的羊驼血清进行效价检测,检测合格后会抽取120ml的羊驼全血,用淋巴细胞分离液进行PBMC的分离。
4. RNA提取及cDNA文库制备:用无酶RNA提取试剂盒提取PBMC中的RNA,反转录成cDNA,再经PCR扩增得到VH及VL序列。
5. 噬菌体文库构建:单链抗体文库构建基于噬菌体展示技术(尤其是M13噬菌体展示技术),通过同源重组的方式将扩增的VH片段与VL片段通过Linker相连并克隆到噬菌体载体上,使得scFv抗体展示在噬菌体表面。免疫文库库容高达109-1010,文库多样性>90%、插入率95%、阳性率>95%。
6. 噬菌体文库筛选:文库筛选的方式有很多,包括固相、液相、磁珠及细胞筛选,先进行负向筛选再进行正向筛选为一轮,通常3-4轮就可以得到亲和力强且针对靶标分子的抗体序列。
7. scFv抗体表达:根据下游实验的需要可以对抗体进行个性化定制,比如各种种属来源的IgG表达、各种种属的scFv抗体表达等。
卡梅德生物可为客户提供各种种属的scFv抗体文库构建服务,比如驼源、鼠源、兔源、牛源、猪源等,根据客户的需求进行合理的方案设计和个性化定制,为客户的科研项目及药物抗体开发助力。
引用:
[1] Ahmad ZA, Yeap SK, Ali AM, Ho WY, Alitheen NB, Hamid M. scFv antibody: principles and clinical application. Clin Dev Immunol. 2012;2012:980250.
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